lateks aglütinasyon nedir / Anti-Streptolizin O (ASO) Testi : Kural, Yöntem, Yorumlama, ve Klinik Anlamlılık - monash.pw

Lateks Aglütinasyon Nedir

lateks aglütinasyon nedir

&#;r&#;n A&#;ıklaması

M45 MICROGEN® LEGIONELLA

MICROGEN® LEGIONELLA, Legionellapneumophila ve seçici besiyerinden yaygın olarak izole edilen diğer Legionella türlerinin identifikasyondoğrulamasına yönelik aglütinasyon testidir.

Test L. pneumophila şüphesiolan hasta numuneleri ve çevresel kaynaklar için uygundur ve L. pneumophila serogrup 1 ve serogrup* ve yaygın olarak izole edilen diğer Legionellatürlerinin ayrı ayrı identifikasyonunu mümkün kılar.

*Not: Klinik Mikrobiyoloji klavuzunda henüz belirtilen L. pneumophila serogrup 16, serogrup 6ile çapraz tepki gösterdiğinden teorik olarak Microgen serogrup latexreaktifi L. pneumophila serogrup 16izolatları ile aglütinasyon oluşturacaktır.

ÇALIŞMA PRENSİBİ

Test Reagent 1 (M45a); içerisindeki latex parçaları L. pneumophila serogrup 1’e karşı oluşan polyclonal tavşan antibodyleriile kaplanmıştır. Test Reagent (M45b); içerisindeki latex parçaları L. pneumophila serogrup ’e karşıoluşan polyclonal tavşan antibodyleri ile kaplanmıştır. Test Reagent Species(M45d) ; içerisindeki latex parçaları 10 yaygın Legionella türlerine karşı oluşan polyclonal tavşan antibodyleri ilekaplanmıştır.  Bu latex parçaları uygun Legionella bakterileri içerensüspansiyon veya ilgili Legionellabakterilerinin inaktif antijenleri ile karıştırıldığında aglütinasyon sonucugözle görünür çökelti oluşur.

KİT İÇERİĞİ

M45aTest Reagent 1

L. pneumophilaserogrup 1’e karşı oluşan polyclonal tavşan antibodyleri ile kaplanmış latex parçalar

(% Sodyum Azide ile korunmuş) ( Mavi Kapak)

                        

M45

mL                        

M45bTestReagent

L. pneumophilaserogrup ’e karşı oluşan polyclonal tavşan antibodyleri ile kaplanmış latex parçalar

(% Sodyum Azide ile korunmuş) ( Sarı Kapak)

                        

mL                        

M45c Positive Control

İnaktif Legionellaantijen süspansiyonu ( test reaktiflerine karşı tepki gösteren)

 (% Sodyum Azide ile korunmuş) (Siyah Kapak)

1ml

 

M45dTest ReagentSpecies

10 yaygın Legionella türlerinekarşı oluşan polyclonal tavşan antibodyleri ile kaplanmış latex parçalar

(% Sodyum Azide ile korunmuş) ( Kırmızı Kapak)

 

mL                        

M40 % İzotonik (Saline) Tuz Çözeltisi

(% Sodyum Azide ile korunmuş) ( Beyaz Kapak)

2 X mL

Kullanım Talimatı

 

Disposable Aglütinasyon Slideları

 

Disposable Karıştırıcı Çubuklar

 

 

KİT İÇERİĞİNE İLAVE EDİLECEKLER

Bakteriyal öze

Legionella seçicibesiyeri

Camkaynatma tüpleri

% İzotonik tuz çözeltisi

 

ÖRNEK HAZIRLAMA

ÖncedenLegionella seçici besiyerindebüyütülmüş tek kolonileri seçiniz.

Kolonilerin Legionella morfolojisi gösterdiğinden emin olunuz.

 

PROSEDÜR

 

REAKTİF KONTROL

Microgen Legionella Latex reaktiflerini ( M45a, b ve d) (Kitiçerisinde mevcut)  nazikçe karıştırarak slide üzerinde ayrı kuyulara her reaktiftenayrı ayrı 1’er damla damlatınız.

Ayrıkuyulardaki farklı reaktiflerin üzerine 1’er damla tuz çözeltisi (M40) (saline)ilave ediniz.

Karıştırma çubuğu yardımıyla reaktif ve tuz çözeltisini karıştırarakkuyu içerisine yayınız.

Slide’ıhafifçe sallayıp, 2 dakika bekletiniz. 2 dakika sonunda aglütinasyon gözlenirise en azından bir reaktif kontamine olmuş demektir ve yeni kit kullanılmalıdır.

 

 

 

 

POZİTİF KONTROL

Test slideüzerinde tek bir kuyuya Positive Control( M45c)(Kit içerisinde mevcut)  damlatınız.

Microgen Test Reagent 1’i ( M45a) (Kit içerisinde mevcut)   nazikçe karıştırarak aynı kuyuya 1 damladamlatınız. Damlalığı slide üzerinedeğdirmeyiniz.

Karıştırmaçubuğu ile karıştırınız. Slide’ı hafifçe sallayıp, 2 dakika bekletiniz. 2dakika içinde aglütinasyon gözlenir.

Aynıprosedürü Test Reagent (M45b)ve Test Reagent Species ( M45d) içintekrarlayınız. Aglütinasyon gözlenmeli, eğer üç reaktiften herhangi birindeaglütinasyon gözlenmiyorsa yeni kit kullanılmalıdır.

 

TEST PROSEDÜRÜ

1.      İzotonik tuz çözeltisinden (M40) (Kit içerisinde mevcut)   aglütinasyon slide (Kit içerisinde mevcut)  üzerindeki her üç kuyuya1’er damla damlatınız.

2.      Steril öze ile seçici agardan Legionella kolonilerinin tanesiseçilerek tuz çözeltisi ile emülsiyonyapınız. Karıştırma çubuğu yardımıyla kuyu içerisinde örneği yayınız.

3.      Ağır vedüz bir emülsiyon oluşturunuz. Eğer doğru emülsiyon oluştuysa ADIM 7’ye geçiniz.

4.      Eğeroluşturduğunuz emülsiyon “ipliksi” veya “taneli” görünüme sahip ise ( geneldeeski kültür kullanımında görülür), aşağıdaki adımları takip ediniz.

5.       mL%’lik tuz çözeltisini cam kaynatma tüpüne koyunuz. Seçici besiyerindenalınan koloniler ile bulanık ve homajen bir süspansiyon oluşturunuz.

6.      Süspansiyon tüplerini 5 dkkaynatıp, oda sıcaklığında soğutunuz. Slide üzerinde üç kuyudan herbirine 30 µlkaynamış süspansiyondan ilave ediniz.

7.      Latex Test Reaktiflerini (M45a, b ved) nazikçe karıştırarak homojen hale getiriniz.

8.      Slide üzerindeki bakteriyalsüspansiyonlardan birine Test Reagent 1’den(M45a)1 damla, bir diğer süspansiyona TestReagent ’den(M45b) 1 damla, üçüncü süspansiyona Test Reagent Species’den (M45d) 1 damladamlatınız.   Damlalığıslide üzerine değdirmeyiniz.

9.       Her biri için ayrı ayrı karıştırma çubuğu kullanarakreaktifleri süspansiyon içerisinde karıştırıp, kuyu içerisine yayınız.

  Slide’ı hafifçe sallayıp, 2 dakikabekletiniz. 2 dakika sonunda aglütinasyon sonuçlarını gözleyiniz.

  Okuma sonrasında kullanılan tümlatex slidelar ve karıştırma çubuklarını atınız.

 

 

 

YORUM

Aglütinasyongözlenen pozitif test örnekleri için kullanılanreaktife göre L. pneumophilaserogrup 1 veya L. pneumophilaserogrup veya diğer yaygın Legionellatürleri bulunduğu söylenir.

Aglütinasyongözlenmeyen test örnekleri için Legionellatürlerinin bulunmadığı söylenir.

 

YAYGIN OLARAK İZOLE EDİLEN LEGIONELLA TÜRLERİ

Legionella Türleri  ( 10 yaygın tür)

monash.pwei

L. bozemanii 1

L. bozemanii 2

L. dumoffi

L. longbeachae 1

L. longbeachae 2

L. jordanis

L. gormanii

L. anisa

L. feelei

 




Anti-Streptolizin O (ASO) Testi : Kural, Yöntem, Yorumlama, ve Klinik Anlamlılık

Anti-Streptolizin O (ASO) Testi Nedir?

Anti-Streptolizin O (ASO veya ASLO), çoğu A grubu türleri ve birçok C grubu ve G streptokok grubu tarafından üretilen bir immünojenik, oksijen-labil hemolitik toksin olan streptolizin O'ya karşı üretilen antikordur.

Streptokok enfeksiyonları sırasında, bakterilerin hücre dışı ürünleri, spesifik antikorlar üreterek vücudun yanıt verdiği antijenler gibi davranır. Streptolizin O (SLO), streptokok piyojenlerin hemen hemen tüm türleri tarafından üretilen iki hemolizinden (diğeri Streptolizin S) biridir. “O " harfi, bu toksinin oksijen kararsız olduğunu gösterir. SLO toksinin kalp dokusu üzerinde doğrudan toksik etkileri vardır. Bir streptokok enfeksiyonu sırasında, SLO, cam tüpte  antijenin hemolitik özelliklerini nötralize eden spesifik antistreptolizin (ASO) antikorlarının üretimini uyarır.

ASO Testinin Klinik Anlamı

Todd ünitesinden (veya > IU) daha büyük bir antistreptolizin titresi yetişkinlerde pozitif bir test olarak kabul edilirken, yetişkinler için normal değer Todd ünitesinden daha azdır ve bu da negatif bir testi gösterir. Aso antikor titresinin ölçümü, özellikle akut poststreptokok glomerülonefrit ve romatizmal ateş olmak üzere streptokok sonrası hastalıkların araştırılmasında önemlidir.

Akut romatizmal ateşi olan hastaların %80'inden fazlası ve akut glomerülonefritli hastaların %95'inde ASO titreleri artmıştır.
Antikorlar seviyesi, streptokok enfeksiyonundan hafta sonra yükselmeye başlar, hafta içinde zirveye ulaşır ve daha sonra ay boyunca önemsiz seviyelere geri döner, bu nedenle pozitif bir test mevcuttur ancak daha yeni olan  A, C gruplarına ve G streptokok enfeksiyonuna işaret edebilir.

ASO için Testler

ASO testi lateks aglütinasyon veya lam aglütinasyon gibi serolojik yöntemlerle yapılır. ELISA tam titre değerini tespit etmek için gerçekleştirilebilir. Burada sunulan test prensibi, prosedürü ve yorumu lateks Anti-Streptolizin O (ASO) testine dayanmaktadır.

ASO Testinin Kuralları

Aso lateks aglütinasyonu, insan serumunda Antistreptolizin-O'ya karşı antikorların nitel ve yarı nicel ölçümü için hızlı ve basit bir testtir. Bu yöntem, test numunesinde biyolojik olarak inert lateks parçacıklarına ve streptokok antikorlarına bağlı streptokok ekzoenzimleri arasındaki immünolojik reaksiyona dayanır. Reaktif, serumda IU/mL veya daha yüksek bir ASO titresinin varlığının lateks parçacıklarının görünür bir aglütinasyonunu sağladığı şekilde ayarlanmıştır.

ASO Kalitatif Testi (Tarama)

Laboratuvarda ASO Testi Yöntemi Nasıl Olmalıdır? 

Tüm reaktifleri ve numuneleri oda sıcaklığına getirin.
Pozitif kontrolün bir damlasını (50 µl) ve hasta serumunun 50 µl'sini cam plaka üzerindeki ayrı dairelere yerleştirin.
ASO lateks reaktifini hafifçe sallayın ve test edilecek ve kontrol edilecek numunenin yanındaki her daireye bir damla (45 µl) ekleyin.
Karışımı tüm test alanına yayan tek kullanımlık bir karıştırıcı kullanarak iyice karıştırın ve plakayı hafifçe eğin. Rotator veya elle yaklaşık 2 dakika çalkalayın ve aglütinasyonun varlığı veya yokluğu açısından gözlemleyin.

ASO Kalitatif Testi Sonuçları Nasıl Yorumlanır?

Negatif sonuç:
Lateks parçacıkları süspansiyonu iki dakika içinde aglütinasyon olmamıştır .
Pozitif sonuç:
Lateks parçacıkları süspansiyonunun aglütinasyonu iki dakika içinde gerçekleşir ve bu da IU/ml'den fazla bir ASO seviyesini gösterir.

ASO Kantitatif Testi

Laboratuvarda ASO Kantitatif Test Yöntemi:

Titre edilecek serum g / l tuzlu su çözeltisi içinde seri bir şekilde seyreltilir (, , vb).
Plaka üzerine bir damla pozitif kontrol yerleştirin. ASO pozitif kontrol serumunu, kontrolün gerçek titresi ile bilinmeyen serumun titresi arasında bir korelasyon bulunmadığından, karşılaştırmalı veya başka amaçlar için seyreltmeye çalışmayın.
Her serum seyreltmesinin 50 ml'sini plaka üzerindeki ardışık yuvarlaklara ayrı ayrı yerleştirin ve tarama metodolojisinde olduğu gibi devam edin.
ASO Nicel Test Sonuçları Nasıl Yorumlanır?
Serum ASO titresi, pozitif sonuç veren en yüksek seyreltme olarak tanımlanabilir. Numunede bulunan yaklaşık ASO seviyesi (IU/ml) aşağıdaki formülle elde edilebilir:

ASO Titre (IU / ml) = pozitif reaksiyon x reaktif duyarlılığı ile en yüksek seyreltme ( IU / ml)
örneğin aglütinasyon 1: 4 titresine kadar mevcutsa, yaklaşık serum ASO seviyesi 4 x = IU / ml'dir

ASO Testi Hakkında Bilinmesi Gerekenler

Yüksek hemolizli ve lipemik serumun yanı sıra plazma da test sonuçlarını etkiler. ASO antikor testlerinde bazen pozitif reaksiyonlara (genellikle IU/ml'den daha az) neden olan streptokok bakterisi etkenli olmayan durumlar da sebep olabilir. Bunların arasında romatoid artrit, tüberküloz, pnömokok pnömonisi, gonore ve hepatit bulunmaktadır.

ASO Testi Normal Değeri Nedir?

ASO testi normal değeri IU/mL'nin altındaki değerler olmalıdır.

ASO Yüksekliği Hangi Durumlarda Olur?

Kanda ASO testinin normal değerlerin üstünde olması, vücudumuzda  antistreptolizin antikorlarının varlığını gösterir. Bu da yakın zamanda geçirilmiş bir streptokok  enfeksiyonuna işaret eder. Sadece bu testin yüksekliği ile bir hastalık tanısı koyulamaz. ASO yüksekliği durumunda doktorunuz gerek görür ise ilave testler de isteyip klinik durumunuz hakkında bilgi sahibi olacaktır.

Aşağıdaki yazılarımızda da ASO testi hakkında bilgi sahibi olabilirsiniz:

ASO Testi ve Yorumlanması
ASO Testi Nedir?

Bu konuya dair bir sorunuz varsa siz de uzmanlarımıza 7/24 Soru sorabilirsiniz.Soru sormak için tıklayın.

Yorumlar

Yorum yapabilmek için giriş yapmış olmanız gerekmektedir.

Popüler Blog Yazıları

Babalık Testi Nedir? Babalık Testi Nasıl Yapılır?CEA Nedir? Hangi Durumlarda Yükselir?Free PSA Testi Neden Yapılır?Diabetes Mellitus&#;ta Laboratuvar Tahlillerinin ÖnemiCheck up Nedir ? Check up Hangi Sıklıkla Yapılmalıdır ?ALP Testi Hangi Durumlarda Yapılmalıdır?İdrar Tahlilinde pH Nedir? İdrar Testi pH Normal DeğerleriTahlil Sonucu Ne Nedir?İyi Kolesterol ( HDL) Nedir? HDL Ne İşe Yarar?Kan Vermeye Gitmeden Önce Mutlaka Bu Yazıyı monash.pw Nedir? ASO Yüksekliği Neden Olur?İdrar Kültürü Testi

Summary

Lateks aglütinasyon testi Streptococcus pneumoniae serotip için, basit, hızlı ve ucuz bir yöntemdir ve aynı zamanda yaygın tanı mikrobiyoloji uygulanmıştır. Bu el yazması lateks aglütinasyon reaktif, kalite kontrol prosedürlerinin içi üretim ve pnömokok serotipleme Bu tekniğin uygulanması anlatılmaktadır.

Introduction

Streptococcus pneumoniae (pnömokok) beş yaşın altındaki çocuklarda morbidite ve mortalitenin önemli bir nedeni eski dünya çapında, özellikle kaynak fakir ayarlarında 1,2,. Zatürree, sepsis gibi hayatı tehdit eden durumlara lokalize enfeksiyonlardan Pnömokok hastalığı aralıkları ve 1,2 menenjit.

Pnömokokların fazla 90 serotip tespit onların kapsül polisakkarit 3 farklılıklara dayalı olmuştur. Şu aşılar kapsüler polisakkarit hedef ve invaziv hastalık 4 neden önemli serotipten koruma sağlar. Pnömokok izolatlarının serotiplendirme taşıma ve hastalık üzerine aşılamanın etkisini değerlendirmek yanı sıra geniş epidemiyolojik bilgiler 5,6 sağlanması için önemlidir. Pnömokok tipleme için geçerli 'altın standart' yöntemi kapsül şişme deneyi testi, ama zaman alıcıdır ve perfo bazı beceri gerektirirrm 7. Lateks aglütinasyon Dünya Sağlık Örgütü tarafından 7 alternatif bir serotipleme yöntemdir. Lateks aglütinasyon gerçekleştirmek için hızlı ve basit, ve dünya çapında birçok laboratuvarda kullanılmaktadır. Önemli olarak, lateks aglütinasyon pnömokok serotipleme 10, için kapsül şişme deneyi test etmek için karşılaştırılabilir kesinliği göstermiştir. Genel olarak, bu yöntem, kaynak yoksulluğu yanı sıra yüksek miktarda laboratuarlar için idealdir.

Lateks aglütinasyon reaktifler ('lateks reaktifleri') lateks parçacıkları 15 antikorların bağlanması ile oluşturulur. Pozitif bir reaksiyon olarak, bu etiketlenmiş parçacıklar, spesifik bir antijenin varlığında tutunurlar. Ticari lateks reaktifleri Serotiplerin sınırlı bir aralığı için mevcuttur. Lateks reaktifleri aynı zamanda ticari olarak temin edilebilen anti-serumlar kullanılarak 10 in-house hazırlanabilir. Antiserumlar karışımları ("havuzlar") yanı sıra, pnömokokkal s özgü antiserumlarerogroups (örneğin, grup 19), tek tek serotip (örneğin, serotip 5), ve belirli antijenlere karşı ("faktör", örn., serotip 19A tanıyan faktörü 19c) ayrıca, grup içinde serotipleri tanımlanması için 16 mevcuttur.

Bu yazıda, lateks parçacıkları için ticari olarak temin edilebilen antiserumlar pasif ucunu kullanarak lateks reaktiflerin üretilmesinde adımları açıklamaktadır. Bu yöntemin Kalite kontrol (KK) yönlerini tarif edilmiştir ve pnömokok tipleme için lateks reaktiflerin kullanımı için bir protokol dahildir.

Protocol

Içi Lateks Ayıraçların hazırlanması 1.

  1. Glisin tamponlu tuz hazırlanması (GBS)
    1. g glisin, g sodyum klorid ve ml'lik bir cam şişeye damıtılmış su, ml ilave edilir.
    2. Manyetik bir karıştırıcı kullanarak çözmek üzere karıştırılır.
    3. Bir ölçme silindiri ml karışımı aktarın ve ml lik bir toplam yapmak damıtılmış su ilave edilir.
    4. , ml'lik bir cam kaba geri çözeltisini pH'ı kontrol edin ve 5 M sodyum hidroksit ile olarak ayarlanır. NOT: Sodyum hidroksit aşındırıcı, kişisel koruyucu ekipman giyin.
    5. Filtre ml'lik preautoclaved vidalı kapaklı cam şişeye mcM filtreleri ve çok sayıda 60 ml şırınga kullanarak çözüm sterilize.
    6. Oda sıcaklığında saklayın.
  2. % büyükbaş hayvan serum albümini ile GBS hazırlanması
    1. ml'lik bir cam kabın, büyükbaş hayvan serum albümini (BSA) tozunun gramı ve GBS ml ilave edilir ve manyetik bir karıştırıcı kullanılarak eritmek için karıştırın.
    2. Filtre ml'lik bir preautoclaved vida kapaklı bir cam şişeye çok sayıda 60 mi şırıngalar uM filtre yoluyla çözeltinin sterilize edin.
    3. 4 ° C'de saklayın.
  3. Lateks reaktif hazırlama
    1. Alt mikrofuge'ye tüp yuvarlak bir 2 ml etiketleyin.
      Not: tüpler yuvarlak tabanlı bir antikor bağlanmasını etkileyebilir parçacık çökmesini en aza indirmek için kullanılır.
    2. Steril uçları işlemi, mikrofüj tüpüne GBS ul ile P pipet kullanarak, daha sonra lateks tepkime maddesi (yani, havuz, grup, tip veya faktör) hazırlanan uygun pnömokok antiserumu 25 ul ekle. Karıştırmak için beş kez ters çevirin.
    3. Steril fizyolojik salin ul lateks partikülleri ul ekleyerek polistiren lateks parçacıkları seyreltin.
      NOT: Bu daha fazla hacimlerde yapılabilir, ancak lateks reaktifler üretilmiş taze her yapılmalıdır.
    4. 1 (adım hazırlanan) lateks süspansiyonu ul ekleyin, ul antiserumu süspansiyonu (aşama hazırlandı). Karıştırmak için beş kez ters çevirin.
    5. Yavaş dönen bir tekerlek üzerinde 37 ° C'de inkübe edilir (örneğin, cm çapa sahip bir tekerlek için 4 rpm) 2 saat karıştırıldı.
    6. 1, x g'de 15 dakika boyunca santrifüj. Süpernatantı atın ve yavaşça steril tuzlu 2 ml pelletini.
    7. 1, x g'de 15 dakika boyunca santrifüj. Süpernatantı atın ve GBS 1 ml ekleyin ve hafifçe pelletini.
    8. Etiketli bir 5 ml lateks süspansiyonu pipetle tüp kapatıldı vida. GBS başka 1 ml ekleyin.
    9. GBS (pH ) (adım hazırlandı) (ağ / hac)% BSA ihtiva eden 2 ml ilave edilir. % 10 bir koruyucu olarak sodyum azid (ağ / hac) çözeltisi 40 ul ekle.
      NOT: Sodyum azid solunması halinde tehlikeli olduğunu ve bir cilt ve göz tahriş edicidir. Bu inhalasyon yoluyla temas riskini en aza indirir gibi, toz halinde yerine hazırlanmış bir% 10 çözelti satın almak için arzu edilir. Eldiven, bir de dahil olmak üzere kişisel koruyucu ekipmanlar (Bu reaktifi işlerken d gözlüğü) giyilmelidir. Ayrıntılar için Malzeme güvenlik veri sayfasına bakın.
    10. 4 ° C'de saklayın lateks reaktif ile gerçekleştirilebilir.
  4. Negatif kontrol lateks tepkin maddesi hazırlanması
    1. Alt mikrofuge'ye tüp yuvarlak bir 2 ml etiketleyin.
      Not: tüpler yuvarlak tabanlı bir antikor bağlanmasını etkileyebilir parçacık çökmesini en aza indirmek için kullanılır.
    2. Steril uçları işlemi, mikrofüj tüpüne GBS ul ile P pipet kullanarak, daha sonra 25 ul normal tavşan antiserumu ilave edin. Karıştırmak için beş kez ters çevirin.
    3. Adımlarda devam yukarıdaki için

2. Kalite Kontrol Lateks Ayıraçların (QC)

  1. Oda sıcaklığına kadar lateks tepkin maddesi getirin. Kullanmadan hemen önce, yavaşça Tüpü birkaç kez baş aşağı çevirerek lateks tepkin maddesi karışımı.
  2. Bir cam mikroskop lamı üzerine 15 ul pipetleyerek autoagglutination için ayıraç edin ve adımları ve aşağıda gibi devam edin. Hayır olmalıLateks partiküllerin gglutination. Reaktif beyaz ve pürüzsüz görünmesi gerekir.
  3. Düşük geçiş pnömokok izolatı bir paneli karşısında reaktif edin. Izolatların paneli 'hedef' serotipin izolatlarınının (reaktif madde için spesifik serotip test ediliyor) ve 'hedef olmayan' serotiplerini (normalde çapraz olmamalıdır diğer Serotiplerin izolatlarınının içermelidir 3. adımda hazırlanan taze yetiştirilen kültürler kullanın ) tepkin maddesi ile reaksiyona girer. QC geçiren Her bir lateks tepkin maddesi için, her bir hedef ve hedef olmayan serotip en az bir izolat içerir. Serotipte sadece bir hedef ya da hedef olmayan serotip, Test, iki farklı izolat ise.
    NOT: Test paneli invazif hastalık ve / veya tip kültür koleksiyonlarından nadir bazıları her çeşitli serotip izole, içermelidir. Genellikle (veriler gösterilmemiştir) serotipi için daha fazla çaba gerektirir gibi ve dolayısı ile de gücü o test bazı taşıma izole dahil etmek tercih edilirreaktifler f ve reaktifler invaziv ve taşıyıcısını izolatlarının hem serotiplendirme olası yeteneğine sahip olmasını sağlamak.
  4. Hedef ve hedef olmayan pnömokok lateks reaktiflerin Test devam adımları 3 ve 4 de tarif edilen yönteme göre izole edildi.
  5. Sonra en az yılda daha sonra üretim zamanı ve kalite kontrol reaktifleri.
    NOT: Bir reaktif QC geçemezse, toplu atılır ve yeni bir hazırlama yapılmalıdır. Tekrar QC arızası durumunda biz reaktifler Ortika ve ark. 8 ve aşağıdaki tartışmada tarif edilen alternatif yöntemler kullanılarak üretilebilir önerilir.

Serotiplemeye Pnömokok Kültürler 3. hazırlanması

  1. Steril bir spiral kullanarak pnömokok tek bir koloni seçin Primer inokulum plaka yüzeyinin yaklaşık üçte birini kapsayan ve böylece sağlam bir seçici olmayan kan agara bunu izole ve çizgi. Tek koloniler için Streak.
    NOT: defibrinleştirilmiş at veya koyun kanından hazırlanan levhalar uygundur; ama insan kanı veya Sitratlı hayvan kanı ile hazırlanan kan plakaları değildir.
  2. % 5 CO2 içeren bir atmosferde 37 ° C'de levha O / N inkübe edin.
  3. Saflık plaka üzerinde büyüme dikkate ve tipleme için yeterli gelişme olduğunu değerlendirmek.
    Not: pnömokok izolatı saf bir kültürü tipleme için gereklidir. Levha yüzeyi yaklaşık olarak üçte birini kaplayan deneyim konflüent, veya yapışık yakınındaki büyüme genellikle serotipleme tamamlamak için yeterlidir. Pnömokok kültürler autolysis eğilimli olabileceğinden, tipleme için hazırlanan kültürler altkültür, 24 saat içinde test edilmelidir. Serotipleme başlamadan önce en fazla 15 20 dakika kuluçka kültür plaka almayın.

4. İletken Lateks Aglütinasyon Serotipleme

  1. Yaklaşık için oda sıcaklığında bunları buzdolabı tüm reaktifler lateks ayırın ve30 dakika nerdeyse. Kullanmadan hemen önce, yavaşça reaktifleri karıştırmak için tüpler ters.
  2. Bir mikroskop lamı etiketleyin.
  3. Mikroskop lamı üzerine negatif kontrol lateks reaktifi 15 ul yerleştirin.
  4. Döngü yaklaşık yarısı dolu olacak şekilde steril tek kullanımlık 1 ul döngü kullanarak pnömokok kültürünün bir süpürme alır.
  5. Hafifçe negatif kontrol lateks tepkime maddesi damla yakın sürgü yüzeyine inokulum smear. Inokulum cam slayt üzerinde görünür olmalıdır.
  6. Hızlı ve iyice döngü kullanarak negatif kontrol lateks ayıraç içine inokulum karıştırın. Damla başlangıç ​​boyutundan daha fazla yaymak değil emin olun.
  7. Iki ucunda tutarak, slayt Pick up. Ileri ve geri 1 dakika için slayt sallayın. Yavaş yavaş hareket sıvı tutmak ve damla büyüklüğü artmaz emin olmak için özen gösterin.
    NOT: Alternatif bir tabak rocker kullanın.
  8. Makroskopik aglütinasyon (yani, tarafından gözlemlemekçıplak göz) ve siyah bir arka plan karşı süspansiyon takas.
  9. Negatif kontrol lateks reaktifi hiçbir aglütinasyonunu gösterir veya takas yukarıdaki adımları 4,,8 olarak negatif kontrol lateks reaktifin test lateks reaktifleri yerine, kültürünü test devam edin. Taze bir döngü, her zaman kullanılmalıdır. Havuzları ile başlayan lateks reaktiflerin test ile devam edin.
  10. Bir pozitif test elde edilene kadar arka arkaya 'Havuz' lateks reaktifleri her test edin.
    NOT:. Örneğin, ilk slaytta üç büyük olasılıkla havuzları için test özellikle serotip (yerel insidansını yansıtmak için 'tur' yapılabilir havuzlarının test sırası bir pozitif reaksiyon elde değilse, o zaman testi ) ve böylece pozitif bir tepki elde edilene kadar, bir sonraki üç ikinci slayt üzerinde kalan havuzları muhtemelen. Bu, en yaygın serotipler gereken zamanı en aza indirmek ve reaktifler, birinci test edilmesini sağlamaktadır.
  11. Antiserumlar üreticinin anahtarını kullanarak olumlu havuzunda temsil bireysel hangi antiserumlar belirler.
  12. Yukarıdaki adımları 4,,8 olarak "grup" ya da "türü" belirlemek için ayrı ayrı pozitif havuz içinde yer alan bir gruba ya da türlerinin her biri test edin.
  13. Antiserumlar üreticinin anahtarına referans ile bu sonuç belirler. Bir 'tür' tespit edilirse (örneğin, serotip 5), daha sonra başka test gerekli ve bu sonuç kaydedilir.
  14. 'Grup' tespit edilirse (örneğin, grup 19), daha sonra test edilecek faktörleri belirlemek için üreticilerin anahtarına bakın. Bireysel 'faktörü' lateks reaktifleri ile teste devam ve son serotipik (örneğin, serotip 19B) belirler.

Representative Results

Lateks partikülün tip-spesifik antikor pneumococcus un kapsülünün bağlanır ve buradaki antikor etiketlidir partikülleri aglütinasyonu 15 gelişir olduğunda pozitif bir lateks reaksiyon meydana gelir. Şekil 1A arka görünür aglutinasyon testi ve temizleme ile karakterize edilen bir pozitif reaksiyonunu göstermektedir süspansiyonu. Negatif bir reaksiyon yumuşak ve beyaz (Şekil 1B), kalan lateks aglütinasyon reaktif süspansiyonu ile karakterize edilir. Bir pozitif reaksiyon, bir dakikalık bir zaman süresi içinde (yaklaşık 20 saniye içinde, genellikle tespit edilebilir) sonuna kadar dikkat edilmesi gerektiğini, böylece ayıraçlar optimize edilmiştir. Biz 1 dakikalık bir zaman aralığından sonra tepkilerini okuma önermiyoruz. Çok nadiren, reaksiyonlar arka süspansiyon temizleyerek eşliğinde, ya da hiç plan temizlenmesi ile kılçıklı 'görünmez bir damla kenarında zayıf aglütinasyonunu görüntülemek (veriler gösterilmemiştir). Bunlar çoğu gibi ly olumsuz tepkiler. Bu tür durumlarda, retesting ve / veya başka bir serotip yöntemi (örneğin kapsül şişme deneyi tepkime karışımı 17) ile daha ileri araştırmalar önerilir.

Şekil 1
Şekil 1. Pozitif ve negatif lateks aglütinasyon reaksiyonları. Bir pnömokok hazırlıklar pozitif reaksiyon (A) veya olumsuz bir tepki (B) gösteren lateks aglütinasyon maddesi ile karıştırılır izolat. Arka temizlenmesi eşlik Yapıştırma .Orada negatif kontrol lateks tepkin maddesi ya da bir negatif test reaksiyonu (B) görünür bir aglütinasyon olan pozitif reaksiyon, (A) olarak görülmektedir. Fotoğraf 8 izni ile kullanılır."Target =" _blank "> Bu rakamın büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Discussion

Lateks aglütinasyon pnömokok tipleme için basit, hızlı ve ucuz bir yöntemdir. Ticari pnömokok lateks aglütinasyon reaktifler kullanılabilir, ancak şu anda bilinen tüm pnömokok 10,12 serotipleri ayrım yoktur. Ancak, lateks aglütinasyon maddeleri kolayca belirli pnömokok kapsüler antigenlere karşı ortaya çıkan anti-serumlar kullanılarak satın içerisinde imal edilebilir. Burada tarif edilen yönteme göre, antikorlar pasif lateks aglütinasyon reaktif bir set yapmak için lateks parçacıkları eklenir.

Pnömokok polisakkarit kapsül 18,19 izole üzerinde lateks partiküllere bağlı spesifik antikorların antijenlere taktığınızda pozitif lateks bir reaksiyon oluşur. Antikorlara bağlı lateks partikülleri spesifik bir antikor-antijen reaksiyonu, büyütme olmadan gözlemlenmesini sağlar.

Lateks aglütinasyon yüksek kapasiteli laboratuvarlar için uygun bir yöntemdirkaynak fakiri ayarları için de d. Lateks aglütinasyon yöntemi önemli avantajları hiçbir özel ekipman testi gerçekleştirmek için gerekli olduğunu vardır, reaktifler 4 ° C'de 8 de depolandığında en az 2 yıl raf ömrü var ve bu, basit, ucuz ve hızlı olduğunu gerçekleştirmek için. Lateks kümelenme bir pnömokok izolatı serotip yaklaşık 10 dakika sürer, ve dört adete kadar lateks reaktifler, bir slayt üzerinde paralel olarak test edilebilir. Serotiplerin sıklığı önemli bir epidemiyolojik ayarı için bilinen Ayrıca, eğer, deneme testi 17 kapsül şişme deneyi benzer yaygın olan serotipleri içeren havuzlara başlayarak mermi gerçekleştirilebilir. Bu yaklaşım, bir serotip belirlemek için gereken test sayısını en aza indirir. Yöntem ayrıca, farklı operatörler arasında yüksek oranda tekrarlanabilir olduğunu (veriler gösterilmemiştir). Lateks aglütinasyon serotipleme bir dezavantajı, reaktif maddeler üreten yaklaşık 4 saat alarak, zaman tüketen olmasıdır; Birden fazla tepkili olmasına rağmenNTS kolayca paralel olarak üretilebilir. Ayrıca, bazı antijenler, bazı anti-serumlar ile çapraz tepkime ile sonuçlanan farklı pnömokok serotipleri ortak olan (örneğin, serotip 29, 42, Grup 35). (Genellikle daha sorunlu çapraz reaksiyona giren antikorları uzaklaştırmak için absorplanmıştır edilir), ticari antiseranın ve ek reaksiyon tabloları kullanarak mevcut olan serotip ayırt etmek için üretici tarafından sağlanan Ancak, bu çapraz reaksiyonlar iyi karakterize edilir. Antikorlar lateks parçacıkları üzerinde düzgün hizalanmış değilse de geçebilir lateks reaktifleri tepki; Bu QC başarısızlık olarak algılanır. Bizim deneyim, titiz QC piyasada mevcut antiserumlar üretim için kullanıldığında bile, bu yöntemin başarısı için esastır. QC reaktif başına yaklaşık olarak 15 dk ve yukarıda tarif edildiği gibi izole edilen uygun QC bir dizi dayanır.

Burada tarif edilen metot, bir pozitif reaksiyon de wi elde reaktifler ile sonuçlanırtest süresi ince. Bizim tecrübelerimize göre, yanlış pozitif (veriler gösterilmemiştir) pratikte nadirdir. Arasıra yanlış negatif reaksiyonlar gözlenir; Genellikle, bu, belirli bir antiserum ile bilinen sorunlar (örneğin serogrup 6 izolatı Havuz B antiserumu ile reaksiyona girmemekte) veya izolatı ile kapsül ekspresyonunun aşağı regülasyonu ile ilgilidir. Yanlış pozitif veya negatif reaksiyon, bir kör uç 'sonucu verir çoğu durumda imalatçı tarafından sağlanan serotip algrorithm kullanılması da önemlidir. Reaksiyonları yorumlamak zor olduğunda bu gibi durumlarda, ve biz bu kapsül şişme deneyi reaksiyonu gibi alternatif bir yöntemle tekrar-test ve / veya testini öneririz.

Bazı sorun giderme bazen tatmin edici lateks reaktifleri yapmak için gereklidir. Burada açıklanan yöntem, antikor pasif adsorpsiyon 15,19 ile, lateks parçacıkları bağlanmış, böylece kritik bir değişkendir kadar iyi belirler ikinci antikor konsantrasyonu, birLateks partiküllerin yüzeyi kapalı ve antikor, aktif alanlarının 15,20 sonraki hizalamasıdır. Yetersiz veya aşırı antikor, lateks partiküllerin de bağlı olduğu Sonuç olarak, eğer, antikor-antijen reaksiyonu optimum olmaz ve tatmin edici reaktifler 15,20,21 üretilebilir. Antikor titreleri antiserumların farklı partiler arasında değişir gibi, dilüsyonlarının standart bir dizi kuyu 8 gerçekleştirmek reaktifler üretmek olmayabilir. Yararlı bir başlangıç ​​noktası antiserumun bir seyreltme kullanımı ve bu başarılı değilse, daha da antiserumu seyreltin. Bizim tecrübelerimize göre bu genellikle sorunu 8 giderir. Vakaların küçük bir sayıdaki belirteçler hedef izolatları ile test edildiğinde süspansiyon takas eşlik etmediği zayıf aglütinasyon gösterebilir. Reaktifin kalitesini geliştirmek değil, ama tatmin edici reaktifler genellikle santrifüj ihmal ederek üretilebilir ve yıkama adımları 8,22 antiserumu seyreltilmesi Bu durumda

Antikor kaplı lateks parçacıkları çok farklı mikropların 15,20 tespiti, kimlik veya tipleme için tanısal mikrobiyoloji yaygın kullanılmaktadır. Bu nedenle, burada tarif edilen yöntem, diğer amaçlar için lateks tepkin maddeleri hazırlamak için uygun olabilir, Resim uygun antiserumlar kullanılabilir ve yeterli kalite kontrol prosedürleri kabul edilir.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Microparticles based on polystyrene, nmSigma ml-FOr other volumes as required
Normal rabbit serumAntibodies Australia NRS-1mlOr other volumes as required, bring to RT before use
Pneumococcus (Neufeld) antiseraSSI DiagnosticaVariousBring to RT before use
monash.pw
Sterile Bovine Albumin SigmaABring to rRT before use
Sodium azide 10% (v/v) solution VWR InternationalROAC/mlCaution: hazardous if inhaled; skin and eye irritant
Eppendorf Safe-Lock tubes, 2 mlEppendorf Round bottom
Sodium chlorideMerckAP
Calibrated disposable inoculating loops 1 µlCopanCDSO1
Glass microscope slides 76 mm x 26 mmThermo Fisher ScientificLBS RC
5 M NaOHBDHCaution: highly corrosive
GlycineMerck
Horse Blood Agar (HBA) platesThermo Fisher ScientificPPBring to RT before use
monash.pw
Rotating wheelWyble Engineering Development Corporation
Polystyrene flat bottom screw cap tube, 5 mlTechnoplasSSU
60 ml syringes without needlesTerumoSSL
Millex-GP syringe filter unit, µmMerck MilliporeSLGPRS
Brochure on Neufeld antiseraStatens Serum InstitutKey to determining serotypes
monash.pw
Key to pneumococcal factor serumStatens Serum InstitutFor determining serotype within Groups
monash.pw
*alternative sources are available for most materials

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rudan, I., et al.Epidemiology and etiology of childhood pneumonia in estimates of incidence, severe morbidity, mortality, underlying risk factors and causative pathogens for countries.J Glob Health. 3 (), ().
  2. O'Brien, K. L., et al.Burden of disease caused by Streptococcus pneumoniae in children younger than 5 years: global estimates.Lancet. , ().
  3. Henrichsen, J. Six newly recognized types of Streptococcus pneumoniae.J Clin Microbiol. 33, ().
  4. Hausdorff, W. P., Bryant, J., Paradiso, P. R., Siber, G. R. Which pneumococcal serogroups cause the most invasive disease: implications for conjugate vaccine formulation and use, part I.Clin Infect Dis. 30, ().
  5. Mulholland, K., Satzke, C. Serotype replacement after pneumococcal vaccination.Lancet. , ().
  6. Weinberger, D. M., Malley, R., Lipsitch, M. Serotype replacement in disease after pneumococcal vaccination.Lancet. , ().
  7. Satzke, C., et al. Standard method for detecting upper respiratory carriage of Streptococcus pneumoniae: Updated recommendations from the World Health Organization Pneumococcal Carriage Working Group. Vaccine. , ().
  8. Ortika, B. D., Habib, M., Dunne, E. M., Porter, B. D., Satzke, C. Production of latex agglutination reagents for pneumococcal serotyping.BMC Res Notes. 6 (49), ().
  9. Adegbola, R. A., et al.Serotype and antimicrobial susceptibility patterns of isolates of Streptococcus pneumoniae causing invasive disease in The Gambia Trop Med Int Health. 11, ().
  10. Slotved, H. C., Kaltoft, M., Skovsted, I. C., Kerrn, M. B., Espersen, F. Simple, rapid latex agglutination test for serotyping of pneumococci (Pneumotest-Latex).J Clin Microbiol. 42, ().
  11. Turner, P., et al.Improved detection of nasopharyngeal cocolonization by multiple pneumococcal serotypes by use of latex agglutination or molecular serotyping by microarray.J Clin Microbiol. 49, ().
  12. Mudany, M. A., Kikuchi, K., Totsuka, K., Uchiyama, T. Evaluation of a new serotyping kit for Streptococcus pneumoniae.J Med Microbiol. 52, ().
  13. Lalitha, M. K., et al.Serotyping of Streptococcus pneumoniae by agglutination assays: a cost-effective technique for developing countries.Bull World Health Organ. 74, ().
  14. Shutt, C. K., Samore, M., Carroll, K. C. Comparison of the Denka Seiken slide agglutination method to the quellung test for serogrouping of Streptococcus pneumoniae isolates.J Clin Microbiol. 42, ().
  15. Gella, F., Serra, J., Gener, J. Latex agglutination procedures in immunodiagnosis.Pure Appl Chem. 63, ().
  16. Pneumococcus Key to S. pneumoniae types and pneumococcal diagnostic antisera. SSI Diagnostica. , Available from: monash.pw ().
  17. Habib, M., Porter, B. D., Satzke, C. Capsular serotyping of Streptococcus pneumoniae using the Quellung reaction.J. Vis. Exp. (84), ().
  18. Arai, S., et al.Use of antiserum-coated latex particles for serotyping Streptococcus pneumoniae.Microbiol Immunol. 45, ().
  19. Lafong, A. C., Crothers, E. Simple latex agglutination method for typing pneumococci.J Clin Pathol. 41, ().
  20. Ortega-Vinuesa, J. L., Bastos-Gonzalez, D. A review of factors affecting the performances of latex agglutination tests.J Biomater Sci Polym Ed. 12, ().
  21. Yap, K. L. Development of a slide latex agglutination test for rotavirus antigen detection.Malays J Pathol. 16, ().
  22. Severin, W. P. Latex agglutination in the diagnosis of meningococcal meningitis.J Clin Pathol. 25, ().

nest...

oksabron ne için kullanılır patates yardımı başvurusu adana yüzme ihtisas spor kulübü izmit doğantepe satılık arsa bir örümceğin kaç bacağı vardır